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【杨柳科普】冰冻切片技术:常见问题及优化方案

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  清华大学附属垂杨柳医院病理科

  引言

  冰冻切片是术中快速病理诊断的关键技术,但操作中常遇到切片碎裂、卷曲、染色不佳等问题。本文系统梳理了5大常见问题,并提供解决方案,帮助您提高切片质量!

  一、切片碎裂或分层

  可能原因:

  1. 组织未完全冷冻(温度不够低或冷冻时间不足)。

  2. 切片刀钝或刀角设置不当。

  3. 组织内含脂肪或纤维成分较多(如乳腺、甲状腺)。

  解决方案:

  ①充分冷冻:

  - 使用OCT包埋剂,确保组织在-20℃~-25℃下冷冻10~15分钟。

  - 脂肪组织可预冷至-30℃。

  ②调整切片刀:

  - 更换锋利刀片,刀角设置为5°~10°。

  ③辅助措施:

  - 在组织表面滴加少量70%酒精,减少冰晶形成。

  二、切片卷曲或皱褶

  可能原因:

  1. 切片厚度不均(太薄或太厚)。

  2. 防卷板未调节到位。

  3. 组织硬度不均(如肿瘤伴坏死)。

  解决方案:

  ①控制切片厚度:

  - 常规诊断用4~5um,特殊研究可切 10~20um。

  ②调节防卷板:

  - 使防卷板边缘与刀片平行,距离切片约1mm。

  ③优化组织处理:

  - 避免组织中有气泡或坏死区,必要时修平组织块。

  三、切片粘刀或难以展开

  可能原因:

  1. 载玻片温度过低(与切片温差大)。

  2. 切片时室温过高(导致组织软化)。

  解决方案:

  ①预热载玻片:

  - 用手指温热载玻片,或短暂放置于37℃温台。

  ②控制环境温度:

  - 保持切片室温度在20℃~22℃,湿度40%~60%。

  四、染色模糊或对比度差

  可能原因:

  1. 切片未及时固定(导致细胞溶解)。

  2. 染色液过期或污染。

  3. 冲洗不充分(残留苏木素或伊红)。

  解决方案:

  ①快速固定:

  - 切片后立即用95%酒精固定30秒~1分钟。

  ②更换染液:

  - 苏木素每2周过滤,伊红每1个月更换。

  ③充分冲洗:

  - 流水冲苏木素5~10秒,分化液(1%盐酸酒精)1~2秒。

  五、组织脱落(脱片)

  可能原因:

  1. 载玻片未涂粘附剂(如多聚赖氨酸)。

  2. 冲洗时水流过猛。

  3. 组织富含血液或黏液(如胃肠道标本)。

  解决方案:

  ①增强粘附:

  - 使用正电荷载玻片或提前涂布APES胶。

  ②轻柔操作:

  - 冲洗时水流方向与切片呈45°角,避免直接冲击。

  冰冻切片操作口诀

  1. 冷冻要透 (-25℃) → 2. 刀快角小 (5°) → 3. 防卷调好 →

  4. 玻片微温 → 5. 快固定快染 → 6. 轻冲防脱

  注:对疑难组织(如骨、脂肪),可先预实验优化条件!

  您在冰冻切片中还遇到过哪些问题?欢迎留言讨论!

  参考文献

  [1]王伯沎,李玉松. 病理组织染色技术[M]. 2版. 北京:人民卫生出版社,2021: 145-168.

  [2]BANCROFT J D, GAMBLE M. Theory and practice of histological techniques[M]. 7th ed. London: Churchill Livingstone, 2019: 173-215.

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  [4]KIERMAN J A, YOUNG R J. Special stains and H&E: Complementary techniques[J]. Journal of Histotechnology, 2022, 45(2): 78-85. DOI:10.1080/01478885.2022.2043265.

  [5]National Pathology Accreditation Advisory Council. Requirements for staining in histological laboratories[S]. Canberra: NPAAC, 2021.

  [6]LEICA Biosystems. ST5020 multistainer operator manual[EB/OL]. (2022-05)[2023-11-30]. https://www.leicabiosystems.com.

  [7]World Health Organization. Laboratory manual for histological techniques[Z]. Geneva: WHO, 2020.

  本文仅限于公益科普及学术交流,文中部分资料来源于网络,侵删。